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2023-12-07
实验二十八细胞生长曲线的测定
1.实验目的
(1)掌握测定细胞生长曲线的方法。
(2)了解细胞生长发育的特性。
2.实验原理
生长曲线是测定细胞绝对生长数的常用方法,也是判定细胞活力的重要指标,是培养细胞生物学特性的基本参数之一。一般细胞传代之后,经过短暂的悬浮后贴壁,随后经过长短不同的潜伏期,即进入大量分裂的对数生长期。在细胞达到饱和密度后,则停止生长,进入平台期,然后退化衰亡。为了准确描述整个过程中细胞数目的动态变化,需连续对细胞进行计数。通常计数7天。为精确起见,一般每次计数3瓶细胞并取平均值。典型的生长曲线可分为生长缓慢的潜伏期,斜率较大的对数生长期,呈平台状的平台期及退化衰亡4个部分。以存活细胞数(104/ml)对培养时间(h或d)作图,即得生长曲线。
除使用计数法测定细胞的生长曲线外,还可用MTT比色法间接测量。MTT比色法的主要原理是:MTT被活细胞中线粒体琥珀酸脱氢酶还原后,生成暗蓝色甲臜,甲臜被助溶剂溶解后,可在酶标仪上读取光吸收值(OD),在一定范围内光吸收值(OD)与活细胞数量呈线性关系。所以可以通过测量OD值,间接测量活细胞数量。生长曲线常用于测定药物等外来因素对细胞生长的影响。一般在对数生长期的1/3~1/2处加药。细胞计数的时间和次数则依实验目的而定。
3.实验材料与试剂
培养细胞,培养基(RPMIl640或DMEM),小牛血清,Hanks液,0.25%胰蛋白酶溶液(胰酶),0.5%台盼蓝染液,MTT(四甲基偶氮唑盐,5mg/ml溶于PBS),SDS脱色液:0.01mol/LHCl,10%SDS或DTW脱色液:1份TritonX-100溶于3份DMF(N,N二甲基甲酰胺)中,摇匀,然后加2份去离子水,加柠檬酸至终浓度0.2mol/L,调pH至5~6。
4.实验仪器与器材
CO2培养箱、倒置显微镜、酶标仪、微量加样器、血球计数板、培养瓶、试管、吸管、移液管、废液缸、专用盖玻片、96孔板。
5.实验步骤
细胞计数法测定细胞生长曲线
(1)取生长状态良好的细胞,经胰酶消化,用新鲜培养基制成细胞悬液后计数。如为悬浮生长细胞,则离心弃旧培养基后,换上一定量的新鲜培养基然后制成细胞悬液计数。
(2)根据细胞计数结果按每个小方瓶5×104每毫升作传代培养接种细胞,共接种21瓶细胞。
(3)24小时后开始计数细胞,以后每隔24小时计数一次,每次取3瓶细胞,分别进行计数,计算平均值。连续计数7天。
(4)根据细胞计数结果,以单位细胞数(细胞数/ml)为纵坐标,以时间为横坐标绘制生长曲线。
MTT法测定细胞生长曲线(www.chuimin.cn)
(1)取生长状态良好的细胞,常规消化制成单细胞悬液,计数,以2×104均匀接种于96孔培养板。
(2)37℃,5%CO2浓度,饱和相对湿度培养箱中培养,24小时、48小时、72小时、96小时、120小时、144小时、168小时后,每孔加入20μlMTT溶液,继续培养4小时后终止培养。
(3)弃上清,每孔加入150μlDMSO,震荡10分钟,用酶标仪于490nm或570nm处检测各孔OD值。以未接种细胞只加培养液孔作为空白对照调零。
(4)以吸光值为纵坐标,时间为横坐标,绘制生长曲线。
6.注意事项
(1)接种细胞的数量要准确,否则后面的工作无法进行。所使用的培养瓶和每瓶接种的细胞数量要一致。细胞计数最好由一个人操作以减少系统误差。
(2)MTT法的原理是测定细胞线粒体琥珀酸脱氢酶的活性。此法从根本上看是反映细胞的代谢和增殖活力,而非细胞数量。如果想用MTT法间接测量细胞数量,必须先用MTT法作出细胞数量和OD值相互关系的趋势线,在线性相关的范围内可间接测量细胞数量。在需要确知细胞数量的场合不宜用MTT法。
7.思考题
(1)细胞接种的密度与细胞生长曲线的测量结果之间有什么关系?
(2)悬浮细胞和贴壁细胞在计数时有何不同?
附:细胞计数方法
(1)细胞用胰酶消化后加入一定量的培养基,混匀制成细胞悬液。取少量悬液进行台盼蓝染色以计算活细胞的数目。也可以不染色直接计数,再扣除死细胞数(另用0.5%台盼蓝染色计死亡率)。
(2)取一干净的血球计数板,盖上盖片,从盖片两边滴入细胞悬液使之充满计数板和盖片之间。注意滴液勿有气泡,也不能太多,否则会使盖片浮起而使细胞计数不准。
(3)低倍镜下观察,活细胞不着色,台盼蓝着色的细胞呈深蓝色,是不健康或已死亡的细胞,不能计数。找出计数板上的方格。计算四角大格内总细胞数,压大格线者只计左侧和上方,不计右侧和下方。
然后按下式计算:
每毫升原液细胞数为
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