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植物组织培养基的配制与灭菌

【摘要】:实验十八植物组织培养培养基的配制与灭菌1.实验目的掌握植物组织培养培养基的配制方法及操作过程。⑤将培养基煮沸,趁热分装到50ml三角瓶内,每瓶15~20ml左右,用封口膜包扎瓶口后,120℃高压蒸汽灭菌15分钟。

实验十八植物组织培养培养基的配制与灭菌

1.实验目的

掌握植物组织培养培养基的配制方法及操作过程。

2.实验原理

在配制培养基前,为了使用方便和用量准确,常常将大量元素、微量元素、铁盐、有机物质、激素类分别配制成比培养基配方需要量大若干倍的母液。当配制培养基时,只需要按预先计算好的量吸取母液即可。

3.实验试剂

乙酸(NAA),6-苄基氨基嘌呤(6-BA),1mol/LNaOH,1mol/LHCl,蔗糖,琼脂,重蒸水,其他试剂见表1-14MS基本培养基母液。

4.实验器材

电子天平、高压蒸气灭菌锅、烧杯、容量瓶、试剂瓶、pH计、药勺、玻璃棒、电炉

5.实验步骤

(1)MS培养基母液的配制

按照表1-14分别配制,在4℃冰箱保存。

(2)MS培养基的配制

①将各种培养基母液按比例混合:大量元素:微量元素:铁盐:有机营养=10∶1∶1∶1。

②分别加入一定浓度的NAA和BA(可自己设计不同浓度)。慢慢放出液体,使液面与树脂表面刚好相平。树脂床高度为8~10cm。

(4)加样将RNA水解液小心地加到交换树脂上,待样品全部进入树脂后,用50ml去离子水洗柱,以除去核苷、碱基等杂质。

(5)洗脱用蒸馏水洗至不含紫外吸收物质(OD260低于0.02)时,依次用下列洗脱剂分段洗脱:500ml0.02mol/L甲酸溶液;500ml0.15mol/L甲酸;500ml0.01mol/L甲酸-0.05mol/L甲酸钠溶液;500ml0.1mol/L甲酸-0.1mol/L甲酸钠溶液。控制流速0.8~1.0ml/min,用部分收集器洗脱,分管各收10ml。

(6)分析检测以相应的洗脱剂为对照,用紫外分光光度计测定各管洗脱液的OD260值,以洗脱液体积为横坐标,OD260为纵坐标作图,分析各部分的峰波位置。四种常见的单核苷酸的洗脱顺序为CMP、AMP、UMP、GMP。(www.chuimin.cn)

6.注意事项

(1)树脂的预处理过程中,先取强碱性阴离子交换树脂,用水浸泡,注意浸泡要充分,以保证树脂有效利用度。另一方面,经水浸泡后的树脂把水滤干后还要按照0.5mol/L氢氧化钠、1mol/L盐酸、1mol/L甲醛顺序依次进行浸泡可确保将树脂转为甲酸型。

(2)装柱时特别要注意,将处理好的树脂悬浮液倒入柱内过程中,动作一定要缓慢,不能太快,以免将气泡引入树脂影响分离效果。

七.思考题

(1)在柱子预处理过程中要注意的是?

(2)为什么在装柱过程中要避免将气泡引入树脂内?

表1-14 MS基本培养基母液

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③向培养基中加入蔗糖(占3%),琼脂(占0.7%)。

④用1N的NaOH调pH至5.8。

⑤将培养基煮沸,趁热分装到50ml三角瓶内,每瓶15~20ml左右,用封口膜包扎瓶口后,120℃高压蒸汽灭菌15分钟。

6.注意事项

(1)配制贮存母液时,各种成分要按顺序加入,切忌同时加入。

(2)所有的母液都应保存在0℃~4℃冰箱中,若母液中出现沉淀或霉团则不能继续使用。

7.思考题

配制母液时为什么要按顺序加入各药品