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食品生物技术使用重组克隆载体引入受体细胞方案

【摘要】:带有外源目的DNA的重组分子在体外建成之后,需导入适当的寄主细胞中进行繁殖,才能够获得大量纯的重组DNA分子,这一过程即为基因扩增。只有将携带某一目的基因的重组DNA引入适当的受体(宿主)细胞中,进行增殖并获得表达,才算实现目的基因的克隆。现有的重组克隆载体受体系统主要有大肠杆菌系统、酵母系统、枯草杆菌系统。通过优化各个参数,每微克DNA可以得到109~1010个转化体,是用化学方法制备感受态细胞转化率的10~20倍。

带有外源目的DNA的重组分子在体外建成之后,需导入适当的寄主细胞中进行繁殖,才能够获得大量纯的重组DNA分子,这一过程即为基因扩增。只有将携带某一目的基因的重组DNA引入适当的受体(宿主)细胞中,进行增殖并获得表达,才算实现目的基因的克隆。

(一)基因工程受体细胞

目前,以微生物为受体细胞的基因工程技术最为成熟,在生物制药中已得到广泛应用。现有的重组克隆载体受体系统主要有大肠杆菌系统、酵母系统、枯草杆菌系统。

受体细胞必须具备以下特性:①具有接受外源DNA的能力;②一般为限制酶缺陷型;③一般为DNA重组缺陷型;④不适于在人体内或在非培养条件下生存;⑤其DNA不易转移;⑥重组DNA分子的转化或转染。

(二)重组体DNA分子的转化或转染

重组DNA转化到大肠杆菌细胞中的效率与其感受态有关。感受态就是细菌吸收转化因子(DNA)的生理状态。细菌在低温下经CaCl2溶液处理,细胞膨胀成球形,提高了膜的通透性,转化混合物中的DNA,形成抗DNase的羧基—钙磷酸复合物,粘附于细胞表面,经42℃短时间热冲击处理,使受体细菌中诱导产生一种短暂的感受态。在此期间它们能够摄取各种不同来源的DNA,如λ噬菌体DNA或质粒DNA等。冷冻不仅增加感受态的量,而且可延长感受态的时间。由于感受态细胞的增加从而提高了转化效率。

有两种途径可以得到大肠杆菌感受态细胞的贮存物。第一种是直接向供应商购买贮存的感受态细菌,一般每微克质粒DNA可产生108个以上的转化菌落。这些产品非常可靠但价格昂贵。第二种是在实验室自行制备新鲜的感受态细胞。

下面介绍几种大肠杆菌感受态细胞的制备和重组质粒DNA的转化方法。

1.氯化钙制备新鲜的感受态细胞(www.chuimin.cn)

该方法完全适用于大多数大肠杆菌菌株,并且具有简单快速、重复性好的优点。常用于成批制备感受态细菌,这些细菌可使每微克质粒DNA产生将近107个转化菌落,转化效率足以满足所有在质粒中进行的常规克隆的需要。该法制备的感受态细胞可贮存于-70℃,贮存时间过长会在一定程度上影响转化效率。程序如下:①在一个装有100mL LB培养基的1L锥形瓶中,接入一个受体菌单菌落(37℃平板培养16~20h),置300r/min的旋转式摇床上于37℃振摇培养约3h(活菌数不超过108个/mL);②将菌液转移到50mL无菌聚丙烯管中,置冰上冷却至0℃;③于4℃以4000r/min离心10min,弃上清液,回收细胞;④于冰浴上以10mL用冰预冷的0.1mol/L CaCl2重悬每份沉淀细胞;⑤同上法离心,弃上清液以回收细胞;⑥每份细胞沉淀(50mL原菌液)以2mL用冰预冷的0.1mol/L CaCl2重悬;⑦从每管中各吸取200μL细胞悬液到微量离心管中,每管加入10μL重组质粒DNA,轻轻旋转混匀,置于冰中30min;⑧将离心管放入42℃水浴,静置1.5min,立即移至冰浴中冷却1~2min;⑨每管加入800μL SOC培养基,置37℃摇床上温育45min,使细菌复苏;⑩取适量已转化的细胞涂布于含有20mmol/L MgSO4和相应抗生素的SOC琼脂平板表面,待液体被吸收后倒置平皿,于37℃培养12~16h后可长出转化菌落。

2.用复合剂制备感受态细胞

该法是使上述大肠杆菌菌株暴露于组合的二价阳离子(MnCl2和CaCl2)中更长时间,并且用氯化六氨合高钴、DMSO、DTT(二硫苏糖醇)等试剂复合处理细菌以提高转化效率,但作用机制尚不清楚。所得到的新鲜感受态细胞可立即用于转化,也可分装成小份贮存于-70℃备用。该方法比较复杂,只有在需要很高转化率的少数情况下才考虑采用,在大多数情况下采用第一种方法已满足要求。

当使用重组DNA分子进行转化时,转化的频率比单纯载体分子一般要下降102~104倍。为了提高转化的频率,必须采取必要的措施,抑制那些不带有外源DNA插入片段的载体分子形成转化于菌落。提高转化频率的措施有:①应用碱性磷酸酶处理法,可以阻止不带有DNA插入片段的载体分子发生自身再环化作用,从而破坏其转化功能;②用环丝氨酸富集法,使那些只带有原来质粒载体的细菌致死,同样也可以达到抑制这些不含有DNA插入片段的载体分子形成转化子(菌落)。该法是依据外源DNA片段的插入作用,导致质检的某种基因失活这一原理建立的。

3.高压电穿孔转化法(电转化法)

该法既可用于将DNA导入真核细胞,也可用于转化细菌。通过优化各个参数(包括电场强度电脉冲长度和DNA浓度等),每微克DNA可以得到109~1010个转化体,是用化学方法制备感受态细胞转化率的10~20倍。当电场强度和脉冲长度以一定方式组合而使细胞死亡率在50%~75%时,转化效率可达到最高。据报道,线状λ噬菌体DNA的转化效率仅为小质粒超螺旋DNA的0.1%,而质粒的大小对转化效率影响不大。

制备用于电转化法的细胞要比制备感受态细胞容易得多,大致过程是:将培养至对数中期的细菌加以冷却、离心,用低盐缓冲液洗涤并回收细胞。用10%甘油重悬细胞,于冰上速冻后置于-70℃贮存(有效期6个月以上)。进行电转化时,将融解后的细胞悬液与重组质粒DNA混合(20~40μL),移入一个预冷的样品槽内,在0~4℃下用较高的场强进行电转化。