NASH患者肠内皮血管中PV1的表达上调,表明GVB在人类NASH的发病机制中也受到损害。这可能有助于解释OCA在NASH患者中的有益作用。F.NASH患者的健康组织或结肠进行PV1染色。该研究较好地将微生物与上皮和肠道血管通透性的增加以及NASH的发展联系起来,并发现①肠道血管屏障的破坏是NASH发病机制的早期事件,也是饮食诱导失调的结果。肠道微生物的重要作用已在临床前NAFLD/NASH模型和NASH患者中明确确立。......
2023-11-16
HFD是一种富含动物饱和脂肪(45%猪油)的饮食,研究表明在C57BL/6小鼠中 HFD可以诱发致胰岛素抵抗、2型糖尿病和NASH的代谢紊乱。研究者首先评估 HFD与对照饮食相比,看是否可以改变IEB和GVB。作为上皮损伤的标志,在喂养后的早期时间点(48小时)分析了紧密连接蛋白ZO-1在HFD小鼠回肠和盲肠固有层中的表达和细菌易位,并与对照组C57BL/6雄性小鼠进行了比较。如图5-5-1A~C所示,在48小时,发现HFD上皮细胞的紧密连接蛋白ZO-1的表达降低(图5-5-1A、B)。HFD中肠上皮细胞相关ZO-1(蓝线)的平均荧光强度比对照喂养的小鼠显著降低(图5-5-1A、B,剖面图),这可能与回肠和盲肠固有层细菌易位增加有关(图5-5-1C)。肠血管屏障遭到破坏的标志物是质膜相关蛋白1(plasmalemmavesicle-associatedprotein-1,PV1),这是一种与内皮横膈膜相关的整合膜蛋白,可通过抗体MECA-32进行标记。研究者发现在48小时,PV1的暴露并没有明显增加(图5-5-1A、B,红线,剖面图)。然而,在HFD开始后1周,通过盲肠和回肠的共聚焦(图5-5-1D)和FACS(图5-5-1E)分析进行评估,ZO-1在肠上皮细胞(EpCAM+)和CD34+血管内皮细胞中均下调。此外,在结肠中,尽管与对照组相比没有达到统计学上的显著差异,HFD处理依然导致血管内皮细胞和上皮细胞中ZO-1表达的减少,而其他紧密连接蛋白如occludin、Claudin-3和Claudin-5的表达不受HFD喂养的影响。同时,在HFD喂养的小鼠的回肠和盲肠中发现PV1显著上调(图5-5-1F、G)。在空肠和结肠中观察到类似的情况(图5-5-1F、G)。
上述结果表明HFD处理后引发的一系列连续事件:首先是IEB的破坏,导致细菌或其分子决定簇从管腔中移位,以及随后的GVB损伤。因此,分析了高负荷的病原体相关分子模式是否可以重现观察到的效果。小鼠灌胃LPS后24小时发现ZO-1表达显著降低,表明IEB遭到损伤;48小时后LPS引起内皮细胞PV1表达增加,且呈剂量依赖性,表明内皮细胞暴露于高浓度LPS时GVB受到了破坏。然后,研究者分析了在HFD喂养的后期,当胰岛素抵抗产生时,GVB是否受到损害,以及这是否与肝脏内炎症反应增加有关。为此,给小鼠喂食含有60%脂肪(60%HFD)的饮食,与45%HFD不同,可以在动物模型中诱导炎症反应。此外,在喂食60%HFD持续24周的小鼠中,通过回肠和结肠中的PV-1染色进行评估(图5-5-2A、B)证明GVB被破坏,这与血液中LPS易位的增加有关(图5-5-2C)。NASH的诱导通过肝脏中的脂质堆积(油红O染色,图5-5-2D)、纤维化(胶原纤维的天狼星红染色,图5-5-2D)和血清转氨酶升高(ALT,图5-5-2E)来证实。通过改变对葡萄糖和胰岛素耐量试验的反应(图5-5-2F),发现小鼠也表现出明显的胰岛素抵抗。肝脏中观察到明显的炎症迹象,炎性细胞因子和趋化因子(IFN-γ、IL33和CCL2)(图5-5-2G)和免疫细胞(CD45+细胞)的增加,特别是CD4+和CD8+T细胞、单核细胞和巨噬细胞(图5-5-2H)。上述结果表明,HFD喂养的早期,导致IEB破坏从而引发细菌易位,随后是GVB遭到破坏。GVB的干扰在NASH和炎症驱动的胰岛素抵抗和肥胖症的整个发展过程中保持不变。
图5-5-1 周的HFD喂养足以引起肠道血管屏障的破坏
注:A~C.小鼠在取肠前,分别用对照组饮食(Ctrl)和HFD喂养48小时。(A)回肠和(B)盲肠切片染色CD34(绿色),PV1(红色),ZO-1(渐变)和DAPI(青色)表达,第一行显示合并的图像;第二行仅显示具有梯度的CD34和ZO-1,以及指示荧光强度测量位置的虚线;第三行显示每个标记的强度配置文件。测定回肠和盲肠中的CFU,如C中所示,喂养1周的小鼠(D~G)肠道成像为(D)整块或(F)切片。E.用FACS分析来自盲肠和回肠的细胞悬液中ZO-1的表达。G.对CD34+区域进行PV1定量。(www.chuimin.cn)
图5-5-2 长期饲喂HFD会导致GVB破坏和肝脏炎症和脂肪变性
注:A~H.小鼠在取肠前,分别用对照组饮食(Ctrl)和HFD喂养24周。A.回肠和结肠切片进行CD34(绿色)、PV1(红色)和 DAPI(蓝色)表达染色。B.对CD34+区域进行PV1MFI定量。C.测定Ctrl或HFD喂养的小鼠血清中LPS水平。D.肝切片进行H&E,ORO或天狼星红染色分析。E.Ctrl或HFD喂养的小鼠血清ALT浓度。F.空腹和腹腔注射葡萄糖(2g/kg小鼠)和胰岛素(0.2IU/kg小鼠)6小时后进行葡萄糖耐量试验和胰岛素耐量试验。G.通过qPCR分析Ctrl或HFD 喂养的小鼠肝脏中的基因表达。H.FACS染色Ctrl或HFD喂养的小鼠肝脏中的免疫细胞以绝对数表示。
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2023-11-16
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2023-11-16
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