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家兔心血管和呼吸运动受不同因素影响的实验指导

【摘要】:观察某些重要的神经、体液因素对动脉血压和呼吸的作用,以及两个系统功能间的相互影响。神经调节主要是心血管反射,其中最重要的是颈动脉窦和主动脉弓压力感受性反射。以1%戊巴比妥钠溶液每公斤体重3ml,从远离耳根部位的耳缘静脉中缓慢注射,麻醉家兔。用动脉夹夹住颈总动脉的近心端,在结扎处和动脉夹之间,距离应在3cm左右,便于插管。保持插管和动脉的方向一致,防止血管壁被插管刺破。

【实验目的】

学习哺乳类动物急性实验的常规操作(动物麻醉、手术前固定、手术器械的正确使用、血管与神经的分离、动脉插管、气管插管等技术),掌握动脉血压的直接测量法和呼吸运动的间接测量法。观察某些重要的神经、体液因素对动脉血压和呼吸的作用,以及两个系统功能间的相互影响。

【实验原理】

正常情况下,机体的动脉血压保持相对恒定。这种恒定是通过神经体液调节实现的。神经调节主要是心血管反射,其中最重要的是颈动脉窦和主动脉弓压力感受性反射。体液调节最主要的是儿茶酚胺类激素(如肾上腺素和去甲肾上腺素)。同时,机体又是各个系统相互影响的整体,除心血管调节外,还可伴随其他系统的改变,如呼吸系统、泌尿系统等。

【实验对象】

家兔。

【实验器材】

生物信号采集系统主机、呼吸换能器、血压换能器、生物电放大器、兔板、手术器械、注射器、手术照明灯、纱布、动脉夹、动脉插管、气管插管、刺激保护电极、1%戊巴比妥钠、生理盐水、1250U/ml肝素、1∶10000去甲肾上腺素、1∶10000盐酸肾上腺素、0.25%酚妥拉明、0.1%普萘洛尔、0.005%异丙肾上腺素、0.1%乙酰胆碱、0.1%阿托品、3%乳酸、生理盐水等。

【实验内容和方法】

1.动物准备

(1)家兔捉持、称重和麻醉:捉持家兔并称重。以1%戊巴比妥钠溶液每公斤体重3ml,从远离耳根部位的耳缘静脉中缓慢注射,麻醉家兔。注射时密切观察动物的呼吸、心跳、肌张力瞳孔反射等,以防麻醉过深而死亡。麻醉后,将家兔仰卧于兔板上,四肢和门牙用绳子固定。注意颈部必须放正拉直,以利于手术。

(2)颈部剪毛、手术以及分离颈总动脉、神经和气管:剪去颈部手术野的兔毛,剪下的兔毛应及时放入盛水的杯中浸湿,以免到处飞扬。在甲状软骨下缘沿正中线用手术刀切开皮肤,切口5~7cm。用止血钳逐层分离皮下组织和肌肉,暴露气管。在气管两侧深层,找到颈总动脉鞘内的颈总动脉,颈总动脉鞘内还有三根神经,最粗的是迷走神经,其次是交感神经,减压神经最细。在打开颈总动脉鞘前先仔细分辨这三根神经。用玻璃分针游离右侧迷走神经、左侧三根神经以及颈总动脉,用不同颜色的棉线穿线备用。每条神经和颈总动脉分离2~3cm。注意不要过度牵拉和钳夹神经,以免神经受损。右侧颈总动脉分离约5cm,下穿两根线,分别用于结扎和固定动脉插管。分离气管,在气管下穿线备用。

(3)气管插管:在气管靠近头端用剪刀剪一倒“T”形切口,插入气管插管,用线固定,以保证家兔呼吸通畅。

(4)动脉插管:插管前检查插管的开口处是否光滑,以防插入后戳破血管。在插管内灌注生理盐水,再注入1ml左右1250U/ml的肝素溶液,以防凝血。排净管内气泡。将右颈总动脉的远心端结扎(注意分支的甲状腺动脉,可两端结扎后剪断)。用动脉夹夹住颈总动脉的近心端,在结扎处和动脉夹之间,距离应在3cm左右,便于插管。用锋利的眼科剪在靠近远心端结扎处向下作一斜形切口,约为管径的一半。然后将动脉插管向心脏方向插入颈总动脉,用已穿好的棉线结扎,并缚紧固定于插管的侧管上。保持插管和动脉的方向一致,防止血管壁被插管刺破。打开动脉夹,即可见血液冲入动脉插管中。打开输液开关,血液的动脉压作用于血压换能器,即可记录血压的波动。

(5)心电图电极放置:在家兔的右上肢、左右下肢上插入针式电极,分别与生物电放大器的负极、正极和接地极相连,引导家兔的Ⅱ导联心电图。

(6)呼吸换能器的放置:将呼吸换能器与气管插管的一端连接,通过测量气体流速反映呼吸运动。

2.仪器准备 按照图3-14-3连接仪器。

图3-14-3 心血管系统的调节及与呼吸系统的相互影响实验框图

3.观察项目 每个实验步骤中都要加上适当的标注,以利于实验结束后数据的统计和分析。

(1)观察并同时记录正常动脉血压、心电图和呼吸波。在动脉血压波动中辨认心搏波(Ⅰ级波)和呼吸波(Ⅱ级波)。

(2)用动脉夹夹闭左侧颈总动脉5~10s,然后松开动脉夹。记录夹闭和放松颈总动脉前后的动脉血压、心电图和呼吸波。

(3)用刺激保护电极勾在左侧减压神经上,对减压神经进行刺激,观察和记录刺激前后各通道的波形变化。

(4)在气管插管上接一根约50cm长的橡皮管,把插管的侧支堵住,使家兔只能通过加长的橡皮管呼吸。观察和记录刺激前后各通道的波形变化。

(5)通过插管灌入高浓度CO2,观察和记录刺激前后各通道的波形变化。

(6)从耳缘静脉快速注射3%乳酸1ml,观察和记录刺激前后各通道的波形变化。(www.chuimin.cn)

(7)先观察比较两耳的血管网情况(包括血管网数目和充血情况),结扎左侧交感神经,在靠中枢端(脊髓胸段)剪断交感神经,等待片刻,比较两耳血管网情况。最后,用连续电刺激对左侧交感神经的外周端进行刺激,再比较两耳血管网的扩张充血情况。

(8)快速抬起家兔的头部,维持2~5s,观察和记录刺激前后各通道的波形变化,然后将动物放平。快速抬起家兔的后肢,维持2~5s,观察和记录刺激前后各通道的波形变化。

(9)药物对血压的影响:待血压稳定后,依次自耳缘静脉注射下列药物,观察血压变化(可根据课时情况选择其中部分项目)。

1)1∶10000去甲肾上腺素0.1ml/kg,观察和记录刺激前后各通道的波形变化。

2)1∶10000盐酸肾上腺素0.1ml/kg,观察和记录刺激前后各通道的波形变化。

3)0.25%酚妥拉明0.1ml/kg,观察和记录刺激前后各通道的波形变化。

4)1∶10000盐酸肾上腺素0.1ml/kg,观察和记录刺激前后各通道的波形变化。

5)1∶10000去甲肾上腺素0.1ml/kg,观察和记录刺激前后各通道的波形变化。

6)0.005%异丙肾上腺素0.05ml/kg,观察和记录刺激前后各通道的波形变化。

7)0.1%普萘洛尔0.5ml/kg,观察和记录刺激前后各通道的波形变化。

8)0.1%乙酰胆碱0.05ml/kg,观察和记录刺激前后各通道的波形变化。

9)0.1%阿托品2ml/kg,观察和记录刺激前后各通道的波形变化。

(10)结扎左侧迷走神经,剪断靠近中枢端,观察和记录此时的动脉血压、心电图和呼吸波;然后用刺激保护电极刺激左迷走神经的外周端(近心端),观察和记录此时的动脉血压、心电图和呼吸波。再结扎右侧迷走神经,靠近中枢端剪断,观察和记录各通道的波形变化;然后用刺激保护电极刺激右迷走神经的外周端(近心端),观察和记录刺激前后各通道的波形变化。

(11)待各项实验步骤完成后,选取各实验步骤的波形,打印实验结果。

【注意事项】

(1)麻醉要适量。过浅,兔子会挣扎;过深则反射不灵敏,且容易引起家兔死亡。

(2)动脉插管要与动脉方向保持一致,既可使血液压力顺利传送到血压换能器,又可防止插管刺破血管。

(3)观察完每一项实验后,必须等到血压基本恢复正常后,再进行下一个实验项目。

(4)分离神经要用玻璃分针,不能牵拉神经使神经受损。

(5)经常用生理盐水湿润神经,以免影响刺激效果。

【想一想】

(1)由耳缘静脉注射1∶10000去甲肾上腺素0.1~0.2ml,分析动脉血压和心率的变化。

(2)分析结扎、剪断迷走神经以及电刺激迷走神经外周端时,动脉血压和呼吸发生改变的机制。