动脉血压的影响因素及实验指导

2023-11-09 理论教育版权反馈

【摘要】：观察某些重要的神经、体液因素对动脉血压的作用。打开橡胶管夹，血液的动脉压作用于血压换能器，即可记录血压的波动。图2-9-9 影响动脉血压因素实验仪器连接图2）启动计算机，进入生物信号采集应用程序窗口。3）设置信号显示通道依次为心电图、瞬时心率、动脉血压、刺激波。记录夹闭和放松颈总动脉前后的动脉血压、心电图和心率。结扎、剪断迷走神经以及电刺激迷走神经外周端，分析动脉血压和心率改变的机制。

【实验的目】

学习哺乳类动物急性实验的常规操作（动物麻醉、手术前固定、手术器械的正确使用、血管与神经的分离、动脉插管、气管插管等技术），掌握动脉血压的直接测量法。观察某些重要的神经、体液因素对动脉血压的作用。

【实验原理】

正常情况下，机体的动脉血压保持相对恒定。这种恒定是通过神经体液调节实现的。神经调节主要是心血管反射，其中最重要的是颈动脉窦和主动脉弓压力感受性反射。体液调节最主要的是儿茶酚胺类激素（如肾上腺素和去甲肾上腺素）。

【实验对象】

家兔。

【实验器材】

哺乳动物手术器械、生物信号采集系统、呼吸换能器、血压换能器、生物电放大器、兔板、注射器、手术照明灯、纱布、动脉夹、动脉插管、气管插管、刺激保护电极、1％戊巴比妥钠、生理盐水、1250U／ml肝素、1∶100000去甲肾上腺素等。

【实验内容与方法】

（1）动物准备

1）家兔捉持、称重和麻醉：家兔的捉持和称重方法参见第二章中的“动物的捉持和称重”。将1％戊巴比妥钠溶液以每公斤体重3ml，从远离耳根部位的耳缘静脉中缓慢注射，麻醉家兔。注射时密切观察动物的呼吸、心跳、肌张力、角膜反射等，以防麻醉过深而死亡。麻醉后，家兔仰卧于兔板上，四肢和门牙用绳子固定。注意颈部必须放正拉直，以利于手术。

2）颈部剪毛、手术以及分离颈总动脉、神经和气管：剪去颈部手术野的兔毛，剪下的兔毛应及时放入盛水的杯中浸湿，以免兔毛到处飞扬。在甲状软骨下缘沿正中线用手术刀切开皮肤，切口5～7cm。用止血钳逐层分离皮下组织和肌肉，暴露气管。在气管两侧深层，找到颈总动脉鞘内的颈总动脉，颈总动脉鞘内还有3根神经，最粗的是迷走神经，其次是交感神经，减压神经最细。在打开颈总动脉鞘前先仔细分辨这3根神经。用玻璃分针游离3根神经及颈总动脉，用不同颜色的丝线穿线备用。每条神经和颈总动脉分离2～3cm。注意不要过度牵拉和钳夹神经，以免神经受损。右侧颈总动脉分离约5cm，下穿两根线，分别作为结扎和固定动脉插管用。分离气管，在气管下穿线备用。

3）气管插管：在气管靠近头端用剪刀剪一倒“T”字形的切口，插入气管插管，用线固定，以保证家兔呼吸通畅。

4）动脉插管：插管前检查插管的开口处是否光滑，以防插入后戳破血管。在插管内灌注生理盐水，再注入1ml左右1250U／ml的肝素溶液，以防凝血。排净管内气泡。将右颈总动脉的远心端结扎（注意分支的甲状腺动脉，可两端结扎后剪断）。用动脉夹夹住颈总动脉的近心端，在结扎处和动脉夹之间，距离应3cm左右，便于插管。用锋利的眼科剪在靠近远心端结扎处向下作一斜形切口，约为管径的一半。然后将动脉插管向心脏方向插入颈总动脉，用已穿好的丝线结扎，并缚紧固定于插管的侧管上。保持插管和动脉的方向一致，防止血管壁被插管刺破。打开动脉夹，即可见血液冲入动脉插管中。打开橡胶管夹，血液的动脉压作用于血压换能器，即可记录血压的波动。

5）心电图电极放置：在家兔的右上肢、左右下肢上插入针式电极，分别与生物电放大器的负极、正极和接地极相连，引导家兔的心电图。

（2）仪器准备

1）按照图2-9-9连接仪器。

图2-9-9 影响动脉血压因素实验仪器连接图

2）启动计算机，进入生物信号采集应用程序窗口。(www.chuimin.cn)

3）设置信号显示通道依次为心电图、瞬时心率、动脉血压、刺激波。

【观察项目】

（1）观察并同时记录正常动脉血压、心电图和心率。在动脉血压波动中辨认心搏波（Ⅰ级波）和呼吸波（Ⅱ级波）。

（2）用动脉夹夹闭左侧颈总动脉5～10s，然后松开动脉夹。记录夹闭和放松颈总动脉前后的动脉血压、心电图和心率。在夹闭和松开颈总动脉时要即时加上标注。每个实验步骤中都要加上适当的标注，以利于实验结束后数据的统计和分析。

（3）用刺激保护电极勾在左侧减压神经上，对减压神经进行刺激，观察和记录刺激前后各通道的波形变化。

（4）由耳缘静脉注射1∶100000去甲肾上腺素1～2ml，再观察和记录刺激前后各通道的波形变化。

（5）结扎左侧迷走神经，在靠近中枢端剪断，用刺激保护电极刺激迷走神经的外周端（近心端），观察和记录刺激前后各通道的波形变化；再结扎右侧迷走神经，在靠近中枢端剪断，用刺激保护电极刺激迷走神经的外周端（近心端），观察和记录刺激前后各通道的波形变化。