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PCR技术:简介与原理

【摘要】:聚合酶链式反应是20世纪80年代后期由K.Mullis等建立的一种体外酶促扩增特异DNA片段的技术。PCR是利用针对目的基因所设计的一对特异寡核苷酸引物,以目的基因为模板进行的DNA体外合成反应。延伸 70~74℃时,在TaqDNA聚合酶和4种脱氧核糖核苷三磷酸底物及Mg2+存在的条件下,以引物3′端为起始点沿着互补的单链模板进行DNA链延伸反应。

【目的要求】

1.学习聚合酶链式反应的原理。

2.掌握PCR扩增DNA的操作方法。

【实验原理】

聚合酶链式反应(polymerase chain reaction,PCR)是20世纪80年代后期由K.Mullis等建立的一种体外酶促扩增特异DNA片段的技术。PCR是利用针对目的基因所设计的一对特异寡核苷酸引物,以目的基因为模板进行的DNA体外合成反应。由于反应循环可进行一定次数,所以在短时间内即可扩增获得大量的目的基因。PCR技术具有高灵敏度、特异性强、操作简便等特点。虽然PCR技术也存在出错倾向高、产物大小受到限制和必须先有目标DNA序列等缺点,但仍被誉为20世纪分子生物学研究领域最伟大的发明之一,Mullis也因贡献卓著而获得1993年度诺贝尔奖。PCR是由(变性→退火→延伸)三步基本反应经多次循环而完成的(图4-8)。

(1)变性 加热至90~96℃时,模板DNA双螺旋的氢键断裂,双链解链,形成单链DNA。

(2)退火 当温度突然降低至25~65℃时,模板DNA与引物按碱基互补配对原则结合,此时也存在两条模板链之间的结合,但由于引物的高浓度、结构简单等特点,从而使主要的结合发生在模板与引物之间。

(3)延伸 70~74℃时,在TaqDNA聚合酶和4种脱氧核糖核苷三磷酸底物及Mg2+存在的条件下,以引物3′端为起始点沿着互补的单链模板进行DNA链延伸反应。以上三步为一个循环,每一个循环的产物可以作为下一个循环的模板。因此扩增产物的量以指数方式增加。通常经25~30次可扩增目的片段约105倍,这个量足够分子生物学研究的一般要求。

试剂与器材】

1.试剂

(1)模板 用合适方法制备模板DNA。

(2)引物DNA合成仪合成后,经纯化、定量,无菌去离子水或三蒸水配制成10~50μmol/L的溶液。

(3)TaqDNA聚合酶。

(4)dNTP。

(5)PCR反应缓冲液

(6)1.0%琼脂糖

(7)溴化乙锭(EB)10mg/mL。

图4-8 PCR反应原理

2.器材

PCR自动扩增仪;电泳仪、电泳槽;紫外检测仪;台式高速离心机;可调式移液枪及吸头(0.1~2.5μL、0.5~10μL、2~20μL);离心管(0.2mL,0.5mL)。

【操作方法】

1.按顺序在0.5mL离心管中加入下列试剂:

①双蒸水 12.5μL

②PCR反应缓冲液 2.5μL

③dNTP 2μL

④引物A 2μL(www.chuimin.cn)

⑤引物B 2μL

⑥模板DNA 2μL

⑦TaqDNA聚合酶 2μL

Ti p头吸打数次混匀后稍离心。

2.PCR扩增

95℃-4min→[(95℃-30s,60℃-60s,72℃-60s)30个循环]→72℃-7min→4℃(保存)

3.取10μL PCR产物进行电泳鉴定。

【要点提示】

PCR方法操作简便,但影响因素较多,欲得到好的反应结果,需根据不同的DNA模板摸索最适条件。主要影响PCR结果的因素如下:

1.模板

单、双链DNA都可以作为PCR的模板,若起始材料是RNA,须通过逆转录得到第一条cDNA,以此为模板进行PCR。虽然PCR可以仅用极微量的样品(甚至是来自单一的细胞DNA),但是为了保证反应的特异性,一般推举使用纳克量级的克隆DNA、微克水平的染色体DNA或104拷贝的待扩增片段来做起始材料。原料可以是粗制品,但不能混有任何蛋白酶、核酸酶、TaqDNA聚合酶抑制剂以及能结合DNA的蛋白,因此DNA样品纯度要尽可能地高。

2.退火温度

一般设定比理论tm低5℃,一般提高退火温度会增加扩增的特异性。

3.对照实验

PCR灵敏度高,被检样品极易被污染,PCR实验主要存在以下几种污染:

(1)标本间交叉污染;

(2)PCR试剂的污染;

(3)PCR扩增产物污染;

(4)实验室中克隆质粒的污染;

(5)实验室中气溶胶的污染。

所以在进行PCR实验的时候一定要设置阴性对照实验。阴性对照实验的方法之一是不加入模板(用水代替),其他试剂应完全相同。

【思考题】

1.理论上,通过本次实验模板基因扩增了多少倍?

2.如何设计PCR阴性对照实验?