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测定枯草芽孢杆菌蛋白酶活力-生物化学实验指导

【摘要】:学习福林-酚法测定蛋白酶活力的原理和操作方法。枯草芽孢杆菌蛋白酶粉。表3-21 酪氨酸标准曲线的绘制以不含酪氨酸的“0”号管为空白,分别测定各管吸光度。滤液根据酶活力再次用缓冲液稀释至适当浓度供测试用。

【目的要求】

学习福林-酚法测定蛋白酶活力的原理和操作方法。

【实验原理】

蛋白酶在一定温度与pH条件下,水解底物酪蛋白产生含有酚基的氨基酸(如酪氨酸、色氨酸等)。在碱性条件下,福林-酚试剂极不稳定,易被酚类化合物还原生成钼蓝与钨蓝,根据蓝色的深浅可以推断酶活力的大小。

本实验用一系列不同浓度的酪氨酸标准溶液分别与福林-酚试剂作用,生成蓝色深浅各不同的一系列溶液,用分光光度法测定680nm波长处吸光度,做出酪氨酸浓度-吸光度的标准曲线。然后用酶促水解液与福林-酚试剂进行显色反应,测定A680,查阅标准曲线,即可求得酶活力。

【试剂与器材】

1.试剂、材料

(1)福林-酚试剂 称钨酸钠(NaWO4·2H2O)100g、钼酸钠(Na2MoO4·2H2O)25g置2000mL磨口回流装置内,加蒸馏水700mL、磷酸50mL和浓盐酸100mL。充分混匀,接回流冷凝管,小火回流10h。回流结束后加入硫酸锂(LiSO4)150g、蒸馏水50mL及数滴液体溴,开口继续煮沸15min,以除去多余的溴。冷却后溶液呈黄色(如仍呈绿色,需再重复滴加液体溴的步骤)。将溶液稀释至1000mL,过滤,置棕色瓶中保存。使用时用水1∶2稀释。

(2)0.4mol/L Na2CO3溶液 称取无水碳酸钠42.4g,加水溶解,定容至1000mL。

(3)0.4mol/L三氯乙酸溶液 称取三氯乙酸65.4g,加水溶解,定容至1000mL。

(4)pH7.5磷酸缓冲液 称取磷酸氢二钠(Na2HPO4·12H2O)6.02g、磷酸二氢钠(NaH2PO4·2H2O)0.5g,加水溶解并定容至1000mL。

(5)1%酪蛋白溶液 称取酪蛋白1.00g,用少量0.5mol/L NaOH湿润后,加入缓冲液约80mL,在沸水浴中不断搅拌直至完全溶解。冷却后转入100mL容量瓶中,用缓冲液稀释至刻度。此溶液在冰箱内贮存,有效期为3d。

(6)100μg/mL酪氨酸标准液 称取于105℃干燥至恒重的酪氨酸0.1000g,加入1mol/L HCl溶液60mL溶解,定容至100mL。吸取10mL,用0.1mol/L HCl定容至100mL,即为100μg/mL的使用液。

(7)枯草芽孢杆菌蛋白酶粉(AS1.398)。

2.器材

可见分光光度计;恒温水浴锅;电子天平;吸量管;旋涡混合器;试管及试管架;漏斗;滤纸;研钵;容量瓶。

【操作方法】

1.标准曲线的绘制

取6支试管,编号,分别按表3-21配置溶液。

表3-21 酪氨酸标准曲线的绘制(www.chuimin.cn)

以不含酪氨酸的“0”号管为空白,分别测定各管吸光度。以A680为纵坐标,酪氨酸浓度(μg/mL)为横坐标,绘制标准曲线。根据作图或用回归方程,计算当吸光度为1时的酪氨酸的量(μg),即为吸光常数KK值应在95~100范围内。

2.待测酶液的制备

称取蛋白酶粉1~2g,准确至0.001g(或吸取液体酶1mL),用少量缓冲液溶解,并用玻璃棒捣研。将上清液小心倾入容量瓶中,沉渣中再添加少量上述缓冲液,如此捣研3~4次,最后全部转入容量瓶中,用缓冲液定容至刻度,摇匀后用四层纱布过滤。滤液根据酶活力再次用缓冲液稀释至适当浓度(A680在0.20~0.70范围内)供测试用。

3.蛋白酶活力测定

先将1%酪蛋白溶液放入37℃恒温水浴中预热5min,然后按下列程序操作:

4.计算

酶活力单位定义:在上述条件下,1min水解酪蛋白产生1μg酪氨酸的酶量为一个酶活力单位。以U/g表示:

式中 A——样品平行试验的平均吸光度;

K——吸光常数;

4——反应试剂的总体积,mL;

10——反应时间10min;

n——稀释倍数。

所得结果取整数表示。

【要点提示】

1.不同稀释倍数应做相应的空白试验。

2.待测样品稀释倍数要合适,测定其A680应在0.20~0.70范围内为宜。

3.实验中吸取各试剂的量必须准确,否则误差太大。

【思考题】

常规酶活力测定程序为:酶液适当稀释→最适条件下进行酶促反应→测定反应量→根据酶活力单位定义计算酶活力。以上过程中,哪个阶段的操作误差给实验结果造成的影响最大?为什么?如何防止?