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质粒DNA提取与琼脂糖凝胶电泳的实验成果

【摘要】:实验类型 综合性教学时数 6操作视频一、实验目的掌握从大肠杆菌中制备质粒DNA的方法,提供实验所需载体。了解琼脂糖凝胶电泳的原理和应用范围,掌握琼脂糖凝胶电泳分离DNA的方法。提取质粒DNA也是基因工程中最常见的实验操作。琼脂糖凝胶电泳是在电场作用下,利用琼脂糖的分子筛效应,使DNA分子从负极向正极移动。

实验类型 综合性

教学时数 6

操作视频

一、实验目的

(1)掌握从大肠杆菌中制备质粒DNA的方法,提供实验所需载体

(2)了解琼脂糖凝胶电泳的原理和应用范围,掌握琼脂糖凝胶电泳分离DNA的方法。

二、实验原理

1 .质粒DNA的提取

质粒(Plasmid)是存在于细菌染色体外的DNA分子,其范围大小在 1~200kb以上不等。它是独立于细菌染色体外进行复制和遗传的辅助性遗传单位。质粒在基因工程中是最常用的载体。提取质粒DNA也是基因工程中最常见的实验操作。

提取质粒首先要进行大肠杆菌细胞的制备,制备后可以用碱裂解液进行细胞裂解,使细胞壁破裂,染色体DNA和蛋白质变性,将质粒DNA释放到上清中。尽管碱性溶剂使碱基配对完全破坏,闭环的质粒DNA双链仍不会彼此分离,这是因为它们在拓扑学上是相互缠绕的。而裂解过程中,细菌蛋白、破裂的细胞壁和变性的染色体DNA会相互缠绕成大型复合物,后者被十二烷基硫酸盐包盖。当用钾离子取代钠离子时,这些复合物会从溶液中有效地沉淀下来。离心除去变性剂后,就可以从上清中回收复性的质粒DNA,最后用聚乙二醇沉淀法进行质粒的纯化。对于小量制备的质粒DNA,经过苯酚氯仿抽提,RNA酶消化和乙醇沉淀等简单步骤去除残余蛋白质和RNA,所得纯化的质粒DNA已可满足细菌转化、DNA片段的分离和酶切、常规亚克隆及探针标记等要求,故在分子生物学实验室中常用。

2.琼脂糖凝胶电泳

琼脂糖凝胶电泳技术(Agarosegelelectroghoresis)是分离、鉴定和提纯DNA片段的有效方法。凝胶分辨率取决于使用凝胶的浓度,最大分辨率可以分离分子大小相差50个bp的DNA分子。琼脂糖凝胶可分辨0.1~6.0kb的双链DNA片段。在弱碱性条件下,DNA分子带负电荷。琼脂糖凝胶电泳是在电场作用下,利用琼脂糖的分子筛效应,使DNA分子从负极向正极移动。根据DNA分子大小、结构及所带电荷的不同,它们以不同的速率通过介质运动而相互分离。借助溴化乙锭(EB)等可以与双链DNA结合的作用的染料进行染色,并通过紫外线激发即可观察被分离DNA片段的位置。

三、实验仪器与试剂

1.材料

大肠杆菌E.coliDH5α感受态细胞,pMD18T质粒。

2.仪器

恒温振动培养箱、恒温水浴锅、低温高速离心机、微量移液器、电泳仪、水平电泳槽、紫外投射仪、紫外分光光度计、细菌培养瓶、1.5mL EP管。

3.试剂

无水乙醇、氨苄青霉素粉末、DNA marker、琼脂糖、溴化乙锭水溶液(10mg/mL)、1mmol/L EDTA、Tris-HCl(pH8.0)饱和苯酚。

(1)溶液Ⅰ 50mmol/L葡萄糖,25mmol/L Tris-HCl pH8.0,10mmol/L EDTA。

(2)溶液Ⅱ 0.2mol/L NaOH,1%SDS,用前新配制。

(3)溶液Ⅲ 5mmol/L KAc溶液,pH4.8。

(4)TE缓冲液 10mmol/L Tris-HCl,1mmol/L EDTA pH8.0。

(5)LB液体培养基 胰蛋白胨10g,酵母粉5g,NaCl 10g,加蒸馏水溶解,用NaOH调pH至7.5,加水至1000mL,高压灭菌。

(6)TAE电泳缓冲液 40mmol/L Tris,20mmol/L NaAc,1mmol/L EDTA pH8.0。(www.chuimin.cn)

(7)上样缓冲液 0.25%溴酚蓝、30%甘油。

(8)氯仿/异戊醇 体积比为24∶1。

四、实验内容

1 .质粒DNA的提取(碱裂解法)

(1)将大肠杆菌菌落挑取一环接种在含有2mL LB液体培养基的10mL试管里,37℃振荡培养过夜,16~18h。

(2)取培养的菌液1.5mL移至1.5mL Eppendorf管中,8000r/min离心30s,尽量除去上清液。

(3)加入100μL预冷的溶液Ⅰ,盖紧EP管盖,剧烈振荡,冰上放置5min。

(4)加入200μL新配制的溶液Ⅱ,温和翻转EP管5次(可观察到溶液逐步由混浊变为透明),轻轻混匀内容物,冰上放置5min。

(5)加入150μL预冷的溶液Ⅲ,将EP管盖紧后来回翻转2~3次,混匀后冰上放置5min,12000r/min离心15min。

(6)将上清液转移到另一个EP管中(吸取时不可吸入底部的沉淀)。加入等体积的酚和氯仿:异戊醇各抽提1次,取上清液移入一个新的EP管。

(7)加入2倍体积预冷的无水乙醇和1/10体积的NaAc(3mol/L,pH5.2),盖紧,并翻转EP管数次混匀。

(8)室温放置5min后,以12000r/min离心5min,弃尽上清液。

(9)加入1mL 70%乙醇洗涤管底白色沉淀,吸去上清液,空气干燥或真空抽干。

(10)将沉淀溶于20μL TE缓冲液或ddH2O,完全溶解后,-20℃保存。

(11)提纯质粒的鉴定:紫外吸收检测质粒DNA的浓度和纯度。

2.琼脂糖凝胶电泳

(1)灌胶 将黏胶纸粘于灌胶模槽的两端,制成灌胶模。放入梳子。将模放于水平台上。取一烧杯,加入琼脂糖1.2g和TBE缓冲液100mL,混匀,加热至琼脂糖彻底溶解。待稍冷后,加入5μL饱和的溴乙锭,轻晃混匀,然后轻轻倒入模子。用吸头吸去表面小泡。待冷却成胶。

(2)上样电泳 将胶块移入电泳槽,点样孔一侧靠近负极,注入TBE缓冲液,浸没凝胶,轻轻拔出梳子。加1μL上样缓冲液与5μL质粒溶液混匀,用移液器小心加样。加样时,加样枪头尖端插入上样孔内1/3高度,轻轻将样品推入,使相对密度较大的样品自然沉入上样孔底。避免刺入前后凝胶和刺穿凝胶底部。开启电源,电压调至100V。通常30min后检查。

(3)染色 电泳结束后,将凝胶放入溴化乙锭水溶液中,脱色摇床上染色20min。

(4)结果观察 置凝胶于长波紫外透射仪上,可见清晰的呈淡橘红色的标准品若干梯度条带、质粒DNA泳道可见3个条带。

五、思考题

(1)简要描述质粒提取中,溶液Ⅰ、溶液Ⅱ和溶液Ⅲ的作用以及加入三种溶液反应体系所出现现象的成因。

(2)回答质粒提取中酚氯仿的作用。

(3)质粒电泳后为什么出现三个条带?三个条带分别是什么?