首页 百科知识蛋白质药物相对分子量及纯度测定

蛋白质药物相对分子量及纯度测定

【摘要】:实验十一蛋白质药物的相对分子量及纯度测定1.实验目的学习并掌握SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳测定蛋白质分子量及蛋白质纯度的方法。该法主要依据蛋白质的分子量不同而对其进行分离。离子去污剂SDS与蛋白质的疏水部分相结合,可破坏蛋白质的折叠结构,并使其稳定地存在于一个广泛均一的溶液中。SDS-蛋白质复合物的长度与蛋白质的分子量成正比。因此可以利用SDS-PAGE分析蛋白质的分子量及蛋白质混合物的纯度。

实验十一 蛋白质药物的相对分子量及纯度测定

1.实验目的

学习并掌握SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE)测定蛋白质分子量及蛋白质纯度的方法。

2.实验原理

SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE)因易于操作和广泛的用途,使其成为许多研究领域中一种重要的分析技术。SDS-PAGE是对蛋白质进行量化、比较及特性鉴定的一种经济、快速,而且可重复的方法。该法主要依据蛋白质的分子量不同而对其进行分离。离子去污剂SDS与蛋白质的疏水部分相结合,可破坏蛋白质的折叠结构,并使其稳定地存在于一个广泛均一的溶液中。SDS-蛋白质复合物的长度与蛋白质的分子量成正比。在样品介质和聚丙烯酰胺凝胶中加入离子去污剂SDS和强还原剂后,蛋白质亚基的电泳迁移率主要取决于亚基分子量的大小,而电荷因素可以被忽略。因此可以利用SDS-PAGE分析蛋白质的分子量及蛋白质混合物的纯度。

3.实验试剂与器材

丙烯酰胺,N’,N’-甲叉双丙烯酰胺,SDS,TEMED,10%过硫酸铵,α-巯基乙醇,甘油,溴酚蓝,甘氨酸,盐酸,DTT,考马斯亮蓝R-250,甲醇,冰乙酸,垂直凝胶电泳装置,微量加样枪,电泳仪,沸水浴,eppendorf管,摇床。

4.操作步骤

(1)组装凝胶模具:将玻璃板、样品梳、Spacer用洗涤剂洗净,ddH2O冲洗数次,再用乙醇擦拭后晾干;然后将两块洗净的玻璃板之间加入Spacer,装好玻璃板。

img57

图2-8 凝胶模具组装示意图

(2)灌制分离胶:配制10%分离胶8.0ml,混匀后,将凝胶溶液小心加入模具内,立即覆一层重蒸水,大约20分钟后胶即可聚合,然后将上层重蒸水倾去,用滤纸吸干。

img58

图2-9 用滴管灌制分离胶

(3)灌制浓缩胶:配制6%浓缩胶3.0ml,混匀,在分离胶的上层灌制浓缩胶,插入样品梳;等待30分钟,使凝胶聚合后,小心拔出梳子,不要将加样孔撕裂。

img59

图2-10 将浓缩胶溶液用吸管加入凝胶模具图

img60(www.chuimin.cn)

图2-11 将加样孔梳子插入浓缩胶

(4)装好电泳系统,加入电极缓冲液

(5)制备样品和上样:样品加入等体积的样品缓冲液,在沸水浴中加热5分钟,取出,冷却,用微量加样枪加入上样孔中,如下图所示。

img61

图2-12 将蛋白质样品加入样品孔中

img62

img63

(6)电泳:200V,100mA,溴酚蓝刚跑出分离胶时,停止电泳,大约需45分钟至1小时。

(7)染色及脱色:卸下胶板,剥离胶放入染色液(考马斯亮蓝)中,室温染色1~2小时;加入脱色液,置于80rpm脱色摇床上,每20分钟更换一次脱色液(10ml冰乙酸;45ml乙醇;45ml蒸馏水)至完全脱净。

5.结果分析

(1)以相对迁移率为横坐标,lgMW为纵坐标绘制标准曲线;由该标准曲线,根据迁移率Rf,测定样品蛋白质的分子量。

(2)根据染色的电泳胶板,分析各泳道样品的纯度。

6.注意事项

SDS-PAGE胶的干燥:凝胶干燥时遇到的主要问题是凝胶的变形和破裂。将凝胶放在Whatman3MM滤纸上可防止干燥凝胶变形,但凝胶是否破裂取决于凝胶的厚度和干燥器的质量,因此,应尽量使用薄胶并使凝胶干燥器处于良好状态,使其真空压力波动极少。

7.思考题

(1)出现异常迁移的原因是什么,如何解决?

(2)如果某一样品出现两条带,可能是哪些原因引起的?是否表明该样品一定是不纯的?