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2023-12-07
实验四 重组质粒转染人PBMC细胞
1.实验目的
了解脂质体转染的原理,掌握脂质体转染的基本技术。
2.实验原理
转染是指将克隆获得的外源基因导入哺乳动物细胞的技术。转染技术通常分为生化方法转染和物理方法转染。生化方法转染包括脂质体转染、磷酸钙介导的转染、DEAE(二乙基氨基)-葡聚糖介导转染等,物理方法转染包括电穿孔及生物粒子作用。
脂质体是由磷脂双层构成的具有水相内核的脂质微囊,作为一种可供选择的基因载体,脂质体具有无毒、无免疫原性、可生物降解的特点。由于脂质体具有磷脂双层结构,与细胞膜结构类似,因此可与受体细胞膜融合。阳离子脂质体与DNA混合后将形成一种稳定的复合物,这种复合物可直接加在培养细胞中,然后黏附于细胞表面,通过与细胞膜融合,将外源基因释放到胞浆中。
3.实验试剂及材料
两瓶人PBMC细胞(1×106个/ml),重组质粒(PCDNA3.1-TCRVβ7.1或其他),RPMI-1640培养基、胎牛血清、白介素2溶液(IL-2)、青霉素、链霉素,转染试剂TransMaster,无菌NaCl溶液(150mmol/L),12孔细胞培养板,10ml灭菌离心管,灭菌玻璃滴管,灭菌枪头(1000μl、200μl和10μl),无菌转染用塑料管。
4.实验步骤
(1)将培养的人PBMC细胞悬液转移至10ml离心管中,2000rpm,离心10分钟使细胞沉淀,弃上清,加入1ml无血清RPMI-1640培养液重悬细胞。
(2)调节PBMC细胞浓度
应用细胞计数板在显微镜下计数细胞,计算细胞浓度,用无血清的RPMI-1640培养液调节细胞数至5×105个/ml,滴管吹打均匀。(www.chuimin.cn)
(3)接种PBMC细胞
将调好浓度的细胞悬液加入12孔培养板中,每孔2ml,6孔用于转染,6孔作为对照。
(4)吸取重组质粒pCDNA3.1-TCRVβ7.112μg于1.5mlEP管中,加入无菌NaCl溶液至终体积为300μl,轻轻混匀。
(5)吸取24μl基因转染试剂TransMaster于转染管中,加入无菌NaCl溶液至终体积为300μl,混匀,室温孵育10分钟。
(6)将第5步制得的脂质体溶液加入第4步的质粒溶液中,轻轻混匀,室温孵育25分钟。
(7)将第6步制得的TransMaster/DNA混合溶液加至接种有PBMC细胞的12孔培养板中,100μl/孔。
(8)加入IL-2,1.1μl/ml,以维持PBMC细胞生长。将培养板放入二氧化碳培养箱,培养3小时后换新鲜培养基,同时向孔板内各孔加入胎牛血清,使培养液中含有10%的胎牛血清,维持细胞正常生长,继续培养。
(9)48小时后,将培养的人PBMC细胞悬液转移至10ml离心管中,离心使细胞沉淀(2000rpm,10分钟)。加入含10%胎牛血清的RPMI-1640培养液,重悬细胞。继续培养至检测其他指标。
5.思考题
脂质体转染的原理是什么?
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