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细胞冻存与复苏实验成果

【摘要】:实验二十七细胞的冻存与复苏1.实验目的掌握细胞冻存与复苏的操作过程。注意在细胞冻存时要遵循的原则是“慢冻快融”,即缓慢冻存,快速融化。复苏细胞时则直接将装有细胞的冻存管投入37℃~40℃热水中迅速解冻。将细胞悬液装入冻存管中。

实验二十七细胞的冻存与复苏

1.实验目的

掌握细胞冻存与复苏的操作过程。

2.实验原理

细胞冻存是保存细胞的主要方法之一。利用冻存技术将细胞置于-196℃液氮中低温保存,可以使细胞暂时脱离生长状态而将其细胞特性保存起来,这样在需要的时候再复苏细胞用于实验。而且适度地保存一定量的细胞,可以防止因正在培养的细胞被污染或其他意外事件而使细胞丢种,起到了细胞保种的作用。细胞冻存时需向培养基中加入冻存保护剂——终浓度为5%~15%的甘油或二甲基亚砜(DMSO),它们可使溶液冰点降低,从而使细胞在缓慢冻结条件冻结,这样细胞内水分透出,减少了冰晶形成,从而避免细胞损伤。注意在细胞冻存时要遵循的原则是“慢冻快融”,即缓慢冻存,快速融化。采用“慢冻快融”的方法能较好地保证细胞存活。标准冷冻速度开始为每分钟-1℃~-2℃,当温度低于-25℃时可加速,达到-80℃之后可直接投入液氮内(-196℃)。复苏细胞时则直接将装有细胞的冻存管投入37℃~40℃热水中迅速解冻。

3.实验材料与试剂

培养的细胞,培养基(RPMIl640或DMEM),小牛血清,0.25%胰蛋白酶溶液,二甲基亚砜(DMSO)或甘油,0.5%台盼蓝染液,液氮。

4.实验仪器与器材

4℃冰箱,-70℃冰箱,液氮容器,微量加样器,水浴锅,离心机,冻存管,离心管等。

5.实验步骤

细胞冻存

(1)取待冻存的细胞用胰酶消化,用培养基将细胞冲洗下来。800~1000r/min离心5分钟,弃上清收集细胞。如果是悬浮生长的细胞,则可直接离心收集细胞。

(2)加入适量冻存液(10%甘油+90%培养基,或者10%DMSO+90%培养基)制成细胞悬液。细胞浓度宜大,3×106个/ml左右,并可适量增加小牛血清浓度至20%。

(3)将细胞悬液装入冻存管中。用胶布封裹,做好标记(写上细胞种类、传代次数、冻存时间及冻存条件等)。(www.chuimin.cn)

(4)冻存管在4℃下存放30分钟,转入-20℃1.5~2小时,再转入-70℃4~12小时,最后即可转移到液氮内(-196℃),注意进行登记。

细胞复苏

(1)调配37℃~40℃的温水。

(2)从液氮中取出冻存管立即投入37℃~40℃的温水中,迅速摇动,直至冻存液完全溶解。

(3)将细胞冻存悬液转移到离心管内,加入约5ml培养液,轻轻吹打混匀。800~1000r/min离心5分钟,弃上清。

(4)向细胞沉淀内加入完全培养液,轻轻吹打混匀,然后将细胞悬液转移到培养瓶内,补足培养液进行培养。

(5)复苏次日应换液。待细胞长满后可进行传代培养

6.注意事项

(1)在使用含有DMSO的冻存液时,因为DMSO在室温状态易损伤细胞,所以在细胞加入冻存液后应尽快放入4℃环境中。

(2)准确记录细胞的种类、冻存时间、细胞传代次数、冻存液的品种和冻存者的姓名。

7.思考题

(1)如何运用“缓慢冻存,快速复苏”的原理保存细胞?

(2)细胞复苏时应注意什么?