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2023-12-07
实验二十六细胞的传代培养
1.实验目的
掌握细胞的传代培养方法及操作过程。
2.实验原理
传代培养是维持组织细胞培养及常规保种方法之一,也是几乎所有细胞生物学实验的基础。当细胞在培养瓶中长满后就需要将其稀释分成多瓶,细胞才能继续生长,这一过程就叫传代。传代培养可获得大量细胞供实验所需。传代要在严格的无菌条件下进行。
3.实验材料与试剂
培养的细胞,培养基(RPMIl640或DMEM),小牛血清或胎牛血清,0.25%胰蛋白酶,Hanks液。
4.实验仪器与器材
CO2培养箱,倒置显微镜,超净工作台,培养瓶,试管,移液管,废液缸,75%酒精棉球,酒精灯。
5.实验步骤
(1)进入无菌室之前要用肥皂洗手,然后用75%酒精擦拭消毒双手。
(2)在倒置显微镜下观察细胞形态,确定细胞是否需要传代及细胞需要稀释的倍数。将培养用液置37℃下预热。
(3)打开超净台的紫外灯照射台面30分钟左右,关闭超净台的紫外灯,打开风机清洁空气,除去臭氧。
(4)用75%酒精棉球清洁超净台台面,点燃酒精灯。(www.chuimin.cn)
(5)取出无菌试管和刻度吸管,安上橡皮头,经酒精灯火焰略烧后插在无菌试管内。将培养用液瓶口用75%酒精消毒,过酒精灯火焰后斜置于酒精灯旁的架子上。
(6)移去培养细胞的旧培养基,加入1~2mlHanks液或无血清培养基,轻摇培养瓶,将液体移出,以洗去残留的旧培养基。
(7)向培养瓶内加入1~2ml0.25%胰蛋白酶,盖好瓶盖,轻轻晃动培养瓶使消化液与细胞充分接触后平放培养瓶。然后在倒置显微镜下观察,当细胞收回突起变圆时立即翻转培养瓶,使细胞脱离胰酶,然后将胰酶移出。注意勿使细胞提早脱落入消化液中。
(8)加入少量的含血清的新鲜培养基,反复吹打消化好的细胞使其脱壁并分散,再根据分传瓶数补加一定量的含血清的新鲜培养基制成细胞悬液,然后分装到新培养瓶中。盖上瓶盖,适度拧紧后再稍回转,以利于CO2气体的进入,将培养瓶放回CO2培养箱。
(9)对悬浮培养细胞,省去步骤(6)~(8)。可将细胞悬液进行离心去除旧培养基上清,加入新鲜培养基,然后分装到各瓶中。
6.注意事项
(1)传代培养时要注意无菌操作并防止细胞之间的交叉污染。所有操作要尽量靠近酒精灯火焰周围。每次最好只进行一种细胞的操作。每一种细胞使用一套器材。培养用液应严格分开。
(2)每天观察细胞形态,掌握好细胞是否健康的标准:健康细胞的形态饱满,折光性好,生长致密时即可传代。
(3)如发现细胞有污染迹象,应立即采取措施,一般应丢弃污染的细胞,如果必须挽救,可加含有抗生素的BSS或培养基反复清洗,随后培养基中加入较大量的抗生素,并经常更换培养基等。
7.思考题
(1)贴壁细胞和悬浮细胞传代方法上有什么不同?
(2)细胞培养成功的关键要素是什么?
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