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2023-11-04
1.实验目的
了解琼脂糖凝胶电泳的原理,掌握琼脂糖凝胶的制作及进行电泳的方法。
2.实验原理
带电物质在电场中的定向运动称为电泳。核酸分子是两性解离分子,在pH3.5时,碱基上的氨基基团解离,而三个磷酸基团中只有第一个磷酸解离,整个分子带正电荷,在电场中向负极泳动;在pH8.0~8.3时,碱基几乎不解离,磷酸全部解离,核酸分子带负电荷,在电场中向正极移动。
DNA电泳速率与电荷效应无关,这是由于随着碱基数的增加,DNA分子量增加,电荷数也增加,这样荷质比基本维持一个常数。当不同大小和构象的核酸分子的电荷密度大致相同,在自由泳动时,各核酸分子的迁移率区别很小,难以分开。所以采用适应浓度的凝胶介质作为电泳支持物,发挥分子筛的功能,使得分子大小和构象不同的核酸分子泳动率出现较大差异,达到分离的目的。通常DNA分子迁移速率与其相对分子量成反比。值得注意的是,等长度的单链DNA和双链DNA在中性或碱性凝胶中的迁移率大致相等。
溴化乙啶染料的化学结构及其对DNA分子的插入作用。由于插入了溴化乙啶分子,在紫外光照射下,琼脂糖凝胶电泳中DNA的条带便呈现出橘黄色荧光,易于鉴定。
图1-3 溴化乙啶染料的化学结构及其对DNA分子的插入作用
图1-4 琼脂糖凝胶电泳分离大小不等的DNA片段示意图
3.实验材料与试剂
(1)质粒pUC118
(2)琼脂糖
(3)10mg/ml溴化乙啶(EB)溶液小心称取1g溴化乙啶,转移到广口瓶中,加100ml水,用磁力搅拌器搅拌至完全溶解。用铝箔包裹装液管,4℃贮存。
(4)DNA分子量标准(Marker)
(5)50×TAE电泳缓冲液
Tris碱242g,57.1ml的冰乙酸(17.4mol/L),200ml的0.5mol/LEDTA(pH8.0),用水定容至1000ml。
(6)6×溴酚蓝上样缓冲液(100ml)溴酚蓝0.25g,蔗糖40g,10mM EDTA(pH8.0)0.2ml,4℃保存。
4.实验器材
(1)恒温水浴
(2)电泳槽
(3)电泳仪
(4)微波炉
(5)微量移液器:100~1000μl,10~100μl,0.5~10μl(www.chuimin.cn)
(6)透射紫外观察仪
5.实验步骤
(1)称取1.0g琼脂糖,加入100ml1×TAE电泳缓冲液中,加热使琼脂糖溶解。
(2)凝胶冷却至60℃左右,加入溴化乙啶至终浓度为0.5μg/m1。
(3)选择孔径大小合适的点样梳子,垂直架在电泳胶模的一端,使点样梳子底部距离电泳胶模底部1.0mm。
(4)将琼脂糖溶液倒人模具,凝胶厚度一般为0.3~0.5cm,注意避免产生气泡。室温下15~30分钟后,琼脂糖溶液完全凝固。
(5)小心拔掉点样梳子和电泳胶模两端的挡板,将电泳胶模放入电泳槽,加样孔在负极端。
(6)加入1×TAE电泳缓冲液至电泳槽中,液面高于胶面1~2mm,如点样孔内有气泡,用吸管小心吸出,以免影响加样。
(7)取15μl DNA样品,加入1/10体积的上样缓冲液并混匀。(注:注意点样品要放阴极端!每加完一个样品要更换tip头,以防止互相污染;注意上样时要小心操作,避免损坏凝胶或将样品槽底部凝胶刺穿。)
(8)用微量移液器将DNA样品加入梳孔中,记录样品点样顺序。
(9)接通电源,电压选择为3~5V/cm,使DNA样品向正极移动。注意:长度以两个电极之间的距离计算。
(10)当指示剂迁移距离超过凝胶长度的2/3时,即可终止电泳;切断电源后,凝胶可以直接在紫外线灯下观察或拍照。注意要在透射仪的样品台上铺一张保鲜膜(全班共用一张保鲜膜),赶去气泡,然后将胶槽内的胶块小心滑出至样品台上面。
6.注意事项
(1)加热溶解琼脂糖时应不断地摇动容器,使附于壁上的颗粒也完全溶解。
(2)EB有潜在的致癌危险,操作时必须戴乳胶手套或一次性手套。
(3)紫外光对眼睛有害,观察时应戴上眼镜或防护面罩。
(4)相同分子量但不同构型的DNA分子迁移速率不同。质粒在正常情况下以cccDNA构型存在,在提取过程中由于机械力、酸碱度、试剂等的原因,可能会使DNA链发生断裂。所以,多数质粒粗提物中含有三种构型的质粒:共价闭合环状DNA(cccDNA);开环DNA(ocDNA);线形DNA(LDNA)
图1-5 三种构型的质粒的电泳模式图谱
7.思考题
哪些因素影响带电粒子在电场中泳动?
附录
表1-1 琼脂糖凝胶浓度与线性DNA的最适分辨范围
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